關鍵詞:蛋白質純化服務|實驗技術服務
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蛋白質純化服務|實驗技術服務——pCzn1質粒+Arctic Express宿主菌低溫表達體系。
我們具備豐富的蛋白表達設計經驗及實驗操作技巧，承諾客戶不成功不收費。在獲得重組蛋白產品的同時，我們也會提供相應的原始數據和原始圖片,不需要再額外花費精力重復實驗。另一方面，我們所有的實驗數據真實可信，我們提供原始的表達菌株和克隆質粒，客戶可以依據我們的實驗報告重復我們的實驗結果。
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測序實驗流程：
蛋白純化要利用不同蛋白間內在的相似性與差異，利用各種蛋白間的相似性來除去非蛋白物質的污染，而利用各蛋白質的差異將目的蛋白從其他蛋白中純化出來。每種蛋白間的大小、形狀、電荷、疏水性、溶解度和生物學活性都會有差異，利用這些差異可將蛋白從混合物如大腸桿菌裂解物中提取出來得到重組蛋白。
(1) 根據分子大小不同的分離方法:透析和超過濾(利用蛋白質分子不能通過半透膜的性質);密度梯度離心(蛋白質在介質中離心時質量和密度較大的顆粒沉降較快);凝膠過濾(一種柱層析)
(2) 利用溶解度差別分離:(等電點沉淀法)由于蛋白質分子在等電點時凈電荷為零，減少了分子間靜電斥力，因而容易聚集沉淀，此時溶解度*小);鹽溶與鹽析(利用一定濃度鹽溶液增大或減小蛋白質的溶解度)
(3) 根據電荷不同的分離方法，主要包括電泳和離子交換層析分離;
(4) 蛋白質的選擇吸附分離(利用顆粒吸附力的強弱不同達到分離目的)
(5) 根據配體特性的分離--親和層析(利用蛋白質分子與另一種稱為配體的分子能夠特異而非共價地結合這一生物性質)
(6) 低溫有機溶劑沉淀法: 用與水可混溶的有機溶劑，甲醇，乙醇或丙酮，可使多數蛋白質溶解度降低并析出，此法分辨力比鹽析高，但蛋白質較易變性，應在低溫下進行。
注意事項:
在進行任何一種蛋白質純化的時候，都要時刻注意維護它的穩定性，保護它的活性，有一些通用的注意事項需要牢記，它們包括:
1、操作盡可能置于冰上或者在冷庫內進行。
2、不要太稀，蛋白濃度維持在μg/mL~mg/mL。
3、合適的pH，除非是進行聚焦層析，所使用的緩沖溶液pH避免與pI相同，防止蛋白質的沉淀。
4、使用蛋白酶抑制劑，防止蛋白酶對目標蛋白的降解;在純化細胞中的蛋白質時，加入DNA酶，降解DNA，防止DNA對蛋白的污染。
5、避免樣品反復凍融和劇烈攪動，以防蛋白質的變性。
6、緩沖溶液成分盡量模擬細胞內環境。
7、在緩沖溶液中加入0.1~1mmol/LDTT(二硫蘇糖醇)(或β-巰基乙醇)，防止蛋白質的氧化。
8、加1~10mmol/LEDTA金屬螯合劑，防止重金屬對目標蛋白的破壞。
9、使用滅菌溶液，防止微生物生長。
一、電泳:
在克隆基因表達產物的檢測分析過程中，電泳是常用的方法，但在純化蛋白時，通常都不采用電泳的方法。由于某些特殊的目的，需要用聚丙烯酰胺凝膠電泳純化蛋白質，常用下述方法進行:①從電泳后的凝膠上切下所需的相應條帶，將凝膠壓碎，用緩沖液浸泡，使其中的蛋白質擴散出來，從而獲得純化的蛋白質。此法簡單但回收率低。②將電泳后的凝膠用電洗脫的方法使蛋白質從凝膠轉移到溶液中，從而達到純化的目的。此法快速，回收率高，但需要特殊的電泳裝置。
二、色譜法:
色譜法(chromatography)是蛋白純化中*常用的一種方法，這種方法既可以制備大量的純化蛋白質，又可以保持蛋白質的生物學活性。色譜的種類很多，可分為常規色譜和高效液相色譜(high-performance liquid chromatography,HPLC)。凝膠過濾色譜、離子交換色譜、親和色譜等均為常規色譜法。HPLC包括反相高效液相色譜(reversed-phase HPLC,RP-HPLC)、離子交換高效液相色譜(ion exchange HPLC)等。根據目標蛋白性質的不同可選用相應的色譜分離技術純化蛋白質。
1.凝膠過濾色譜法
凝膠過濾色譜法(gel-filtration chromatography, GFC)又稱排阻色譜。凝膠是一類具有三維空間結構的多孔網狀顆粒物質，如瓊脂糖凝膠(sepharose)、葡聚糖凝膠(sephadex)，將凝膠顆粒裝入色譜柱中即可用于物質的分離。當被分離物質通過凝膠柱時，大于凝膠孔徑的分子不能進入凝膠內部，只能在凝膠顆粒之間的空隙中流動和分配，流經的路途短，可很快被洗脫出來，而小于凝膠孔徑的分子則進入凝膠顆粒內部，在凝膠內部穿行，流經的路程長，移動的速度慢，*后被洗脫出來;分別收集不同時相的洗脫液，即可得到純化的物質。
GFC可在存在有多種離子、去污劑、尿素、鹽酸胍、高或低離子強度、常溫或低溫等多種條件下進行，根據所分離物質的性質不同可選擇相應的色譜條件，從而獲得有生物學活性的純化的生物大分子。
2.離子交換色譜法
離子交換色譜法(ion exchange chromatography,IEC)是根據物質的酸堿度、極性和分子大小的不同進行分離的技術，通常包括吸附、吸收、擴散、穿透、靜電引力等復雜的物理化學過程。自然界的包括蛋白質在內的生物大分子都帶有電荷，當所需分離的物質通過離子交換色譜柱時，由于所帶電荷、分子量等不同，有些被固定相靠靜電引力所吸附，未被吸附的物質可被緩沖液首先洗脫出來;被吸附的物質由于所帶電荷多少不同，對固定相的親和力大小也不同，可被梯度離子緩沖液先后洗脫下來，使同一溶液中的不同物質被分離。色譜柱中填充的陰離子交換劑可用于帶正電荷物質的分離，而陽離子交換劑可用于帶負電荷物質的分離。
3.親和色譜法
許多生物大分子物質具有與其結構相對應的專一分子發生可逆性結合的特征，如酶與底物及輔助因子、酶與抑制劑、抗原與抗體、激素與受體、核酸片段與其互補的核酸序列、生物素與親合素等，分子間的這種結合能力叫作親和力。
親和色譜法可在溫和條件下操作，純化過程簡單、快速、分辨率高，對分離含量極少且性質不穩定的生物活性物質極為有效。但由于不是任何生物大分子之間均有特異的親和力，而針對于某一種親和分子就需要制備專一的親和色譜柱，因此親和色譜的應用具有一定的局限性，主要由于蛋白質尤其是酶、抗原、抗體的分離與純化。